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高通量细胞迁移实验方案:从原理到分析

9848 人阅读发布时间:2025-06-17 11:00

细胞迁移和侵袭是在许多生理和病理事件中起关键作用的基本过程,如形态发生、组织修复、炎症和肿瘤发生。利用体外实验研究细胞迁移具有重要意义。
为了更好地了解潜在的生物学机制和开发潜在的治疗干预措施。科学家利用肿瘤细胞的体外迁移潜能与其体内侵袭特性之间的密切相关性,使得细胞迁移实验成为新型抗癌药物研究的重要工具。通过利用这种关系,研究人员可以有效地评估各种候选药物的疗效和潜力。
到目前为止,已经开发了一系列用于研究细胞迁移的分析方法,其中Boyden小室分析是一种常用的体外技术。该实验利用一个二室系统,在该系统中,细胞被诱导从上室通过多孔膜迁移到下室,遵循化学引诱剂的梯度。为了确保分析的有效性,必须仔细选择膜孔的大小,以防止被动细胞通过,同时允许主动迁移。Boyden小室实验的一些改进已经开发出来,包括使用细胞外基质包被进行侵袭实验,或使用细胞单层进行跨上皮迁移实验。
在本应用中,我们将帮助您完成高通量细胞迁移分析实验,使用新的自动化兼容ThinCert®96孔小室。该系统提供了同时测试多种实验条件的有效方法,有效地简化时间和资源利用,并显著降低与分析相关的总体费用。经过优化的聚碳酸酯膜可产生稳定的趋化性梯度,同时由于其高清晰度,允许进行清晰的成像。这些特性协同作用,使ThinCert®96孔HTS小室成为大规模迁移运动研究的完美解决方案。

 

实验原理

ThinCert® HTS 小室是一种通过提供96个迁移室的平台来促进高通量实验的工具。每个腔室都是独立的,它由两个不同的腔室组成,即位于膜板内的上部腔室和位于接收板内的下部腔室。为了进行分析,将细胞接种到上室中,并给细胞粘附到膜上的机会。然后,将趋化因子置于下室并通过膜被动扩散,诱导细胞向趋化源趋化。在对细胞进行钙黄绿素AM荧光标记后,可以从PC膜的下侧分离迁移细胞,并使用标准荧光微孔板读取器进行定量。此外,还可以进行定性显微镜检查,直接在膜上检测迁移的荧光标记细胞。

 

细胞接种准备(一般细胞培养)

1、目的细胞按照标准细胞培养方案在血清培养基中培养

2、检测前一天用无血清培养基(0.2%BSA)

3、在无血清培养基中培养过夜后,吸出细胞培养基,用PBS冲洗

4、加入胰蛋白酶溶液,启动细胞分离

5、将细胞悬液转移至试管中,以350×g离心5分钟

6、将细胞重新放入预热的细胞培养基中

7、将细胞悬浮液稀释至100000个细胞/ml的接种密度

 

ThinCert®96孔HTS小室中接种细胞

1、向接收板的每个孔中加入200μl 含或不含化学引诱剂的培养基(在这种情况下,不同浓度的FCS从0.25%到10%)

2、将上述制备的细胞悬液加入膜板各孔中50μl

3、将细胞培养板置于37℃、5%CO2的细胞培养箱中培养24小时

 

钙黄绿素染色

1、从接收板各孔中吸出细胞培养基

2、向接收孔中加入150μl 无血清培养基和8μM(在DMSO中稀释)钙黄绿素AM

3、在37°C、5%CO2的细胞培养箱中培养45分钟

 

分离和检测

4、从膜板和接收板的每个孔中吸出细胞培养基

5、用PBS冲洗两块板的孔

6、向接收板中加入胰蛋白酶溶液,使膜下侧迁移的细胞开始脱离

7、胰蛋白酶溶液孵育10分钟,轻轻摇动

8、将180μl 每孔胰蛋白酶细胞悬浮液转移至黑色96孔微孔板的每孔

9、在激发波长为485nm,发射波长为520nm 的读板器中读取荧光

 

迁移分析实验流程

新闻图片1

 

除了从膜基底外侧分离迁移的细胞,还可以在膜上检测细胞。

 

定性显微检测

1、从膜板各孔吸出培养基

2、使用预湿棉签,顺时针和逆时针方向轻轻旋转棉签,去除膜上部(顶端)未迁移的细胞。

3、使用绿色通道中的荧光显微镜检测膜下侧迁移细胞的荧光信号。此外,ThinCert®96孔HTS小室由于其独特的孔结构提供了高透明度。这一特点促进活细胞观察,用于检查细胞形态,评估细胞融合,并以更高的准确性和可靠性进行污染监测。因此,每次实验都伴随着对细胞的连续显微镜监测。

 

在寻找更好的生物标志物、治疗靶点和药物以干预肿瘤转移、血管生成和炎症性疾病等复杂现象方面,体外细胞迁移实验是不可或缺的工具。它们提供了一个可控的环境来测量细胞迁移和分析不同分子的影响,如生长因子和趋化因子,或候选药物。

在迁移实验中,孔径的精确选择至关重要。孔径必须与所研究细胞的尺寸成比例,既具有足够的限制性以防止细胞被动移动,又具有足够的允许性以促进其主动迁移。下表显示了一般膜孔径选择的建议。

 

新闻图片2

 

 

 

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